2-tert-ブトキシエタノールの細菌を用いる復帰変異試験

Reverse Mutation Test of 2-tert-Butoxyethanol in Bacteria

要約

2-tert-ブトキシエタノールについて，細菌を用いる復帰突然変異試験を実施した．

試験菌株として，Salmonella typhimurium(TA100，TA98，TA1535，TA1537)およびEscherichia coli(WP2 uvrA)の5菌株を用いた．用量設定試験においてはS9 mix無添加群および添加群の各試験菌株において2.29～5000 μg/plateの8用量，本試験では156～5000 μg/plateの6用量で試験を実施した．

その結果，S9 mix無添加群および添加群のいずれにおいても，溶媒対照に比べ復帰突然変異コロニー数の明確な増加は認められなかった．これら両試験系での試験結果は，用量設定試験および本試験において再現性が確認された．

以上の結果より，本試験条件下では2-tert-ブトキシエタノールは，変異原性を有しない(陰性)と結論した．

方法

1.　試験菌株

細菌を用いる復帰変異試験に広く使用されていることから，試験菌株としてヒスチジン要求性のSalmonella typhimurium TA100，TA98，TA1535およびTA1537¹⁾ならびにトリプトファン要求性のEscherichia coli WP2 uvrA²⁾の5種類の菌株を選択した．

ネズミチフス菌は昭和58年9月9日にカリフォルニア大学のB. N. Ames教授から，また，大腸菌については昭和58年3月16日に国立衛生試験所(現:国立医薬品食品衛生研究所)から分与を受けた．平成12年6月20日に菌株の特性検査を実施し，本試験に用いた菌株が規定の特性を保持していることを確認した．

各菌株の菌懸濁液はジメチルスルホキシド(DMSO:MERCK KGaA)を添加した後，凍結保存用チューブに0.2 mLずつ分注した．これを液体窒素を用いて凍結し，超低温フリーザーに-80 ℃で保存した．

2.　培地の調製

1)　最少グルコース寒天平板培地(プレート)

オリエンタル酵母工業(株)製のテスメディアAN培地を購入し，試験に用いた．本プレートは，Vogel-Bonnerの最少培地Eを含む水溶液(0.02 %硫酸マグネシウム・7水塩，0.2 %クエン酸・1水塩，1 %リン酸二カリウム・無水塩，0.192 %リン酸一アンモニウム，0.066 %水酸化ナトリウム[いずれも最終濃度])に2 %のグルコース(和光純薬工業(株))と1.5 %の寒天(伊那寒天BA-30A)を加え，径90 mmのシャーレに1枚当たり30 mLを分注したものである．

2)　トップアガー(軟寒天)

塩化ナトリウム0.5 w/v%を含む0.6 w/v% Bacto-agar(Difco)水溶液10容量に対し，ネズミチフス菌を用いる試験の場合，0.5 mmol/L L-ヒスチジン(関東化学(株))-0.5 mmol/L D-ビオチン(関東化学(株))水溶液を1容量加え，大腸菌を用いる試験の場合，0.5 mmol/L L-トリプトファン(関東化学(株))水溶液を同じく1容量加え用いた．

3.　前培養条件

内容量200 mLのバッフル付三角フラスコに2.5 %ニュートリエントブロス(Oxoid Nutrient Broth No.2:OXOID)溶液を25 mL分注し，これに融解した菌懸濁液を50 μL接種した．ウォーターバスシェーカー(MM-10:タイテック(株))を用い，37 ℃で8時間振盪(往復振盪:100回/分)培養し，菌濃度を確認した後試験に使用した．

4.　S9 mix

製造後6ヵ月以内のキッコーマン(株)製S9 mixを試験に使用した．S9 mix中のS9は誘導剤としてフェノバルビタールおよび5,6-ベンゾフラボンを投与したSprague-Dawley系雄ラットの肝臓から調製されたものである．S9 mixの組成を以下に示す．

成分	S9 mix 1 mL中の量

S9	0.1 mL
MgCl₂	8 μmol
KCl	33 μmol
G-6-P	5 μmol
NADPH	4 μmol
NADH	4 μmol
Na-リン酸緩衝液(pH 7.4)	100 μmol
精製水	残量

5.　被験物質

被験物質の2-tert-ブトキシエタノール(ロット番号:00111D2)は純度99.98 %(不純物として水分0.2 %以下，遊離酸[酢酸換算]0.01 %以下を含む)の無色透明液体である．本剤は水に易溶で，水溶液中で安定である．丸善石油化学(株)(東京)から提供された被験物質を使用した．被験物質は，使用時まで冷暗所で保管した．試験終了後，被験物質提供元において残余被験物質を分析した結果，安定性に問題はなかった．

6.　被験物質液の調製

試験の都度，被験物質を日本薬局方注射用水((株)大塚製薬工場)を用いて溶解して調製原液とした．調製原液を使用溶媒を用いて順次所定濃度に希釈した後，速やかに処理を行った．

7.　試験用量の設定

2.29～5000 μg/plateの8用量(公比3)を用いて用量設定試験を実施した．S9 mix無添加群および添加群の各試験菌株でいずれの用量においても復帰突然変異コロニー数の明確な増加傾向は認められなかった．また，各試験菌株のいずれの処理群においても，生育阻害作用は観察されなかった．なお，コロニー計数時，析出等の特筆すべき変化は観察されなかった．

従って，本試験においてはS9 mix無添加群および添加群の各試験菌株において5000 μg/plateを最高用量とし，それぞれ6用量(公比2)を設定した．

8.　陽性対照物質

陽性対照物質として下記に示した物質を使用した．これらの陽性対照物質は，DMSOを用いて溶解し，少量ずつ分注した後凍結保存(-20 ℃)した．

2-(2-フリル)-3-(5-ニトロ-2-フリル)アクリルアミド(AF-2:和光純薬工業(株))
アジ化ナトリウム(NaN₃:和光純薬工業(株))
9-アミノアクリジン塩酸塩(9-AA:Aldrich社)
2-アミノアントラセン(2-AA:和光純薬工業(株))

9.　試験方法

Amesらの原法¹⁾の改良法であるプレインキュベーション法に準じて，S9 mix無添加群および添加群それぞれについて試験を実施した．試験管に，使用溶媒，被験物質液あるいは陽性対照物質溶液を100 μL，次いでS9 mix無添加群の場合，0.1 mol/Lナトリウム・リン酸緩衝液(pH 7.4)を500 μL，S9 mix添加群の場合，S9 mixを500 μL添加し，さらに試験菌液100 μLを加え，37 ℃で20分間振盪培養(プレインキュベーション)した．培養終了後，あらかじめ45 ℃に保温したトップアガーを2 mL添加し，混合液をプレート上に重層した．37 ℃の条件で48時間各プレートを培養した後，被験物質の試験菌株に対する生育阻害作用を確認するため，実体顕微鏡(×60)を用いてプレート上の試験菌株の生育状態を観察した．次いで，復帰突然変異により生じたコロニーを計数した．計測に際してはコロニーアナライザー(CA-11:システムサイエンス(株))を用いた．各濃度につき3枚のプレートを使用した．

10.　結果の解析

復帰突然変異コロニー数が溶媒対照のほぼ2倍以上に増加し，かつ，再現性あるいは被験物質の用量に依存性が認められた場合に，陽性と判定した．

なお，統計学的手法を用いた検定は実施しなかった．

結果および考察

試験結果をTable 1～4に示した．S9 mix無添加群ならびに添加群ともいずれの試験菌株においても，2-tert-ブトキシエタノール処理による復帰突然変異コロニー数の明確な増加傾向は認められなかった．また，各試験菌株のいずれの処理群においても試験菌株に対する生育阻害作用は観察されなかった．一方，陽性対照物質はそれぞれの試験菌株において，溶媒対照群の2倍以上の復帰突然変異コロニーを誘発した．なお，コロニー計数時，析出等の特筆すべき変化は観察されなかった．

以上の試験結果から，本試験条件下において，2-tert-ブトキシエタノールの微生物に対する遺伝子突然変異に関し，陰性と判定した．

なお，本被験物質(2-tert-ブトキシエタノール)の変異原性に関する報告はなかった．類縁体であるn-ブトキシエタノールは細胞を用いる遺伝子突然変異試験で陰性³⁾との報告がある．また，n-ブトキシエタノールはTA97a株を用いたAmes試験⁴⁾，V79細胞を用いたHPRT試験⁵⁾，ヒトリンパ球を用いた姉妹染色分体交換試験(SCE)⁶⁾，SHE細胞を用いた細胞形質転換試験⁷⁾ならびにV79細胞を用いた代謝共同阻害試験⁵⁾でいずれも陽性との報告があるが，陰性報告も多数ある．Barry M. ElliottおよびJohn Ashbyによるレビューで報告された各種のデータによればn-ブトキシエタノールには遺伝毒性はないと結論している⁸⁾．

文献

1)	D. M. Maron and B. N. Ames, Mutat. Res., 113, 173 (1983).
2)	M. H. L. Green and W. J. Muriel, Mutat. Res., 38, 3 (1976).
3)	T. Chiewchanwit and W. W. Au, Mutat. Res., 334(4), 341(1995).
4)	J. C. Hoflack, L. Lambolez, Z. Elias and P. Vasseur, Mutat. Res., 341, 281(1995).
5)	Z. Elias, M. C. Daniere, A. M. Marande, O. Poirot, F. Terzetti and O. Schneider, Occup. Hyg., 2, 187 (1996).
6)	R. Villalobos-Pietrini, S. Gomez-Arroyo, M. Altamirano-Lozano, R. Orozco and P. Rios, Res. Int. Contam. Ambient, 5, 41(1989).
7)	G. A. Kerckaert, R. Brauninger, R. A. Le Boeuf and R. J. Isfort, Environ. Health Perspect, 104, 1075 (1996).
8)	B. M. Elliott and J. Ashby, Mutat. Res., 387, 89 (1997).

連絡先

試験責任者：中嶋　圓

試験担当者：菊池正憲，益森勝志，嶋田佐和子，田中　仁

財団法人食品農医薬品安全性評価センター

〒437-1213　静岡県磐田郡福田町塩新田582-2

Tel 0538-58-1266 Fax 0538-58-1393

Correspondence

Authors: Madoka Nakajima(Study Director)
Masanori Kikuchi, Shoji Masumori, Sawako Shimada, Jin Tanaka

Biosafety Research Center, Foods, Drugs and Pesticides(An-pyo Center)

582-2 Shioshinden, Fukude-cho, Iwata-gun, Shizuoka, 437-1213, Japan

Tel +81-538-58-1266 Fax +81-538-58-1393

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	試験担当者：	菊池正憲，益森勝志，嶋田佐和子，田中　仁
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	Tel 0538-58-1266	Fax 0538-58-1393

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要約

方法

1. 試験菌株

2. 培地の調製

1) 最少グルコース寒天平板培地(プレート)

2) トップアガー(軟寒天)

3. 前培養条件

4. S9 mix

5. 被験物質

6. 被験物質液の調製

7. 試験用量の設定

8. 陽性対照物質

9. 試験方法

10. 結果の解析