代謝活性化法においては、細胞播種後3日目に被験物質をS9 mixと共に6時間処理し、さらに18時間培養した後、染色体標本を作製した。S9は、フェノバルビタ−ル(PB)および5, 6−ベンゾフラボン(BF)処理したSDラットの肝から調製した。
染色体異常の観察は、各濃度当り100個の分裂中期像について行い、染色分体型あるいは染色体型の構造異常(ギャップ、切断、交換など)をもつ細胞の出現頻度を記録した。さらに、倍数体(染色体数が倍化した細胞)についても併せて記録した。結果の判定は、未処理及び溶媒処理の対照群では通常4%以上の異常はみられないため、5%未満を陰性(−)、5%以上10%未満を疑陽性(±)、10%以上を陽性(+)とした。
代謝活性化法においても染色体の構造異常が有意に増加した。S9 mix非存在下では、濃度依存性が明かではないが、S9 mix存在下では濃度依存性がみられ、最高濃度の0.2 mg/mlでは21.0%の出現頻度を示し、大部分が交換型異常であった。
倍数体については、4−エトキシベンゼナミンの処理による有意な出現頻度の増加は認められなかった。
4−エトキシベンゼナミンについての細胞を用いる変異原性に関しては、ラット肝初代培養細胞を用いた不定期DNA合成(UDS)試験で陰性結果を示したことが報告されている3)。
1) | M. Ishidate Jr. and S. Odashima, Mutat. Res., 48, 337 (1977). |
2) | 祖父尼俊雄, 松岡厚子, 環境変異原研究 , 5, 4 (1984). |
3) | N.Yoshima, S. Sugue, H. Iwata, K. Niwa, H. Mori, C. Hashida and H. Simizu, Mutat. Res., 206, 183 (1988). |
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