2,4,6-トリブロモフェノールのチャイニーズ・ハムスター
培養細胞を用いる染色体異常試験

In Vitro Chromosomal Aberration Test of 2,4,6-Tribromophenol
on Cultured Chinese Hamster Cells

要約

2,4,6-トリブロモフェノールの培養細胞に及ぼす細胞遺伝学的影響について，チャイニーズ・ハムスター培養細胞(CHL/IU)を用いて染色体異常試験を実施した．

連続処理(24時間)および短時間処理(6時間)における50 %細胞増殖抑制濃度は，連続処理では0.25 mg/mL，S9 mix非存在下およびS9 mix存在下における短時間処理ではそれぞれ0.31 mg/mLおよび0.33 mg/mLであった．各系列での処理濃度は，50 %細胞増殖抑制濃度の約 2倍濃度を最高処理濃度とし，公比2で5濃度設定した．連続処理では，24時間および48時間処理後，短時間処理ではS9 mix非存在下および存在下で6時間処理し，新鮮培地で更に18時間培養後，標本を作製し，検鏡することにより染色体異常誘発性を検討した．染色体分析が可能な濃度は，48時間連続処理および短時間処理のS9 mix非存在下およびS9 mix存在下において2濃度ずつしか得られなかったため，濃度を設定し直し再度試験を行った．その結果，染色体分析が可能な最高濃度は24時間連続処理では0.10 mg/mL，48時間連続処理では0.050 mg/mLの濃度であったことから，これらの濃度を高濃度群として3濃度群を観察対象とした．S9 mix非存在下およびS9 mix存在下における短時間処理ではそれぞれ0.050 mg/mLおよび0.10 mg/mLが染色体分析の可能な最高濃度であったことから，この濃度を含む3濃度群を観察対象とした．

CHL/IU細胞を24時間および48時間連続処理した群では，いずれの処理群においても，染色体の構造異常や倍数性細胞の誘発作用は認められなかった．短時間処理では，S9 mix非存在下の高濃度群(0.050 mg/mL)および S9 mix存在下で処理した高濃度群(0.10 mg/mL)でそれぞれ10.5 %および23.5 %(gapを含む)の染色体異常が誘発された．一方，S9 mix非存在下および存在下で6時間処理したいずれの処理群においても，倍数性細胞の有意な増加は認められなかった．

以上の結果より，本試験条件下で2,4,6-トリブロモフェノールは，染色体異常を誘発する(陽性)と結論した．

方法

1.　使用した細胞

リサーチ・リソースバンク(JCRB)から入手(1988年2月，入手時：継代4代，現在21代)したチャイニーズ・ハムスター由来のCHL/IU 細胞を，解凍後継代10代以内で試験に用いた．

2.　培養液の調製

培養には，仔牛血清(CS:Cansera International)を10 vol%添加したイーグルMEM(日水製薬(株))培養液を用いた．

3.　培養条件

2×10^4個のCHL/IU細胞を，培養液5 mLを入れたディッシュ(径6 cm, Corning)に播き，37℃のCO2インキュベーター(5 % CO2)内で培養した．連続処理では，細胞播種3日目に被験物質を加え，24時間および48時間処理した．また，短時間処理では，細胞播種3日目にS9 mix存在下および非存在下で6時間処理し，処理終了後新鮮な培養液でさらに18時間培養した．

4.　S9

S9(キッコーマン(株))は，フェノバルビタールと5,6-ベンゾフラボンを投与した雄Sprague-Dawey系ラットの肝臓から調製したものを購入した．添加量は培地に対して5 vol%とした．

5.　被験物質

2,4,6-トリブロモフェノール(ロット番号:70909，マナック(株)，広島)は，白色フレーク状の粉末で，水に対しては100 mM未満，DMSOでは2 M以上，アセトンでは50 mg/mL以上で溶解し，融点87-89℃，沸点119℃/2.0 kPaで，純度99.8 %の物質であった．本物質は空気中で変色し，昇華性を示す物質である．

6.　被験物質の調製

被験物質の調製は，使用のつど行った．溶媒は DMSO(ロット番号:DLF7049，和光純薬工業(株))を用いた．原体を溶媒に溶解して原液を調製し，ついで原液を溶媒で順次希釈して所定の濃度の被験物質調製液を作製した．被験物質調製液は，すべての試験において培養液の0.5 vol%になるように加えた．

7.　細胞増殖抑制試験による処理濃度の決定

染色体異常試験に用いる被験物質の処理濃度を決定するため，被験物質の細胞増殖に及ぼす影響を調べた．被験物質のCHL/IU細胞に対する増殖抑制作用は，単層培養細胞密度計(MonocellaterTM，オリンパス光学工業(株))を用いて各群の増殖度を計測し，被験物質処理群の溶媒対照群に対する細胞増殖の比をもって指標とした．

その結果，連続処理における50 %細胞増殖抑制濃度は0.25 mg/mL，S9 mix非存在下および存在下における短時間処理では，それぞれ0.31 mg/mLおよび0.33 mg/mLであった(Fig. 1)．

8.　実験群の設定

細胞増殖抑制試験の結果より，染色体異常試験において，連続処理および短時間処理のすべての処理群で，50 %細胞増殖抑制濃度の約2倍濃度である0.60 mg/mLを最高処理濃度とし，公比 2で 5濃度を設定した(0.038，0.075，0.15，0.30，0.60 mg/mL)．しかし，染色体分析が可能な濃度は，48時間連続処理および短時間処理のS9 mix非存在下およびS9 mix存在下において2濃度ずつしか得られなかったため，濃度を設定し直し(0.013，0.025，0.050，0.10，0.20 mg/mL)，再度試験を行った．陽性対照物質として用いたマイトマイシンC(MC，協和醗酵工業(株))およびシクロホスファミド(CPA, Sigma Chemical Co.)は，注射用蒸留水((株)大塚製薬工場)に溶解して調製した．それぞれ染色体異常を誘発することが知られている濃度を適用した．

染色体異常試験においては1濃度あたり4枚のディッシュを用い，そのうちの2枚は染色体標本を作製し，別の2枚については単層培養細胞密度計により細胞増殖率を測定した．

9.　染色体標本作製法

培養終了の2時間前に，コルセミドを最終濃度が約0.1 μg/mLになるように培養液に加えた．染色体標本の作製は常法に従って行った．スライド標本は各ディッシュにつき6枚作製した．作製した標本を3 vol%ギムザ溶液で染色した．

10.　染色体分析

細胞増殖率測定の結果と分裂指数により，20 %以上の相対増殖率で，かつ2ディッシュともに0.5 %以上の分裂指数を示した最も高い濃度を観察対象の最高濃度群とし，観察対象の 3濃度群を決定した．その結果(Table 1, 2)，24時間および48時間連続処理では，それぞれ0.10 mg/mLおよび0.050 mg/mLが，S9 mix非存在下およびS9 mix存在下における短時間処理では，それぞれ0.050 mg/mLおよび0.10 mg/mLが染色体分析の可能な最高濃度であったことから，これらの濃度を含む3濃度群を観察対象とした．

作製したスライド標本のうち，1つのディッシュから得られた異なるスライドを，4名の観察者がそれぞれ処理条件が分からないようにコード化した状態で分析した．染色体の分析は，日本環境変異原学会・哺乳動物試験研究会(MMS)1)による分類法に基づいて行い，染色体型あるいは染色分体型のギャップ，切断，交換などの構造異常の有無と倍数性細胞(polyploid)の有無について観察した．また構造異常については1群200個，倍数性細胞については1群800個の分裂中期細胞を分析した．

11.　記録と判定

無処理対照，溶媒および陽性対照群と被験物質処理群についての分析結果は，観察した細胞数，構造異常の種類と数，倍数性細胞の数について集計し，各群の値を記録用紙に記入した．

染色体異常を有する細胞の出現頻度について，溶媒対照群と被験物質処理群および陽性対照群間でフィッシャーの直接確率法2)により，有意差検定を実施した(p<0.01)．また，用量依存性に関してコクラン・アーミテッジの傾向性検定3) (p<0.01)を行った．これらの検定結果を参考とし，生物学的な観点からの判断を加味して染色体異常誘発性の評価を行った．

結果および考察

連続処理による染色体分析の結果をTable 1に示した．2,4,6-トリブロモフェノールを加えて24時間および48時間連続処理したいずれの処理群においても，染色体の構造異常の誘発作用は認められなかった．倍数性細胞については，24時間処理した濃度群(0.10 mg/mL)では，細胞毒性のために740細胞しか観察できなかったが，24時間および48時間連続処理したいずれの処理群においても，倍数性細胞の誘発作用は認められなかった．

短時間処理による染色体分析の結果をTable 2に示した．2,4,6-トリブロモフェノールを加えた短時間処理では，S9 mix非存在下で処理した高濃度群(0.050 mg/mL)およびS9 mix存在下で処理した高濃度群(0.10 mg/mL)でそれぞれ10.5 %および23.5 %(gap を含む)の染色体異常が誘発された．一方，倍数性細胞の誘発作用については，S9 mix非存在下および存在下で6時間処理したいずれの処理群でも，倍数性細胞の有意な増加は認められなかった．

従って，2,4,6-トリブロモフェノールは，上記の試験条件下で，試験管内のCHL/IU細胞に染色体異常を誘発すると結論した．

本物質は，細菌を用いる復帰突然変異試験においては，変異原活性が認められなかった4)．これまでに，多くの臭素化合物(bromoacetic acid, 2-bromopropionic acid, 1-bromo-2-chloroethane, bromochloromethane, 2-bromo-2-methylpropionic acid, 1-bromo-3-chloropropane, 1,4-dibromobenzene等)が，染色体異常を誘発することが報告されており5, 6)，ハロゲン類としての反応性の強さから，DNAに対する傷害性も強いことが示唆された．

文献

1)日本環境変異原学会・哺乳動物試験分科会編，"化学物質による染色体異常アトラス，"朝倉書店，東京，1988, pp. 16-37.
2)吉村功編，"毒性・薬効データの統計解析，事例研究によるアプローチ，"サイエンティスト社，東京，1987, pp. 76-78.
3)吉村功，大橋靖夫編，"毒性試験講座14，毒性試験データの統計解析，"地人書館，東京，1992, pp. 213-223.
4)厚生省生活衛生局企画課生活化学安全対策室監修，"化学物質毒性試験報告，"Vol. 7，化学物質点検推進連絡協議会，東京，1999, p. 411.
5)労働省労働基準局安全衛生部化学物質調査課監修，"既存化学物質　変異原性試験データ集，"日本化学物質安全・情報センター，東京，1996, pp. 167-538.
6)厚生省生活衛生局企画課生活化学安全対策室監修，"化学物質毒性試験報告，"Vol. 2，化学物質点検推進連絡協議会，東京，1995, p. 367.

連絡先
試験責任者：佐々木澄志
試験担当者：日下部博一，高橋俊孝，橋本恵子
(財)食品薬品安全センター秦野研究所
〒257-8523　神奈川県秦野市落合729-5
Tel 0463-82-4751Fax 0463-82-9627

Correspondence
Authors:Kiyoshi Sasaki (Study director)
Hirokazu Kusakabe, Toshitaka Takahashi, Keiko Hashimoto
Hatano Research Institute, Food and Drug Safety Center
729-5 Ochiai, Hadano, Kanagawa, 257-8523, Japan
Tel +81-463-82-4751Fax +81-463-82-9627