2-アミノ-2-エチル-1,3-プロパンジオールの0(対照群)，250，500及び1000 mg/kgを，Sprague-Dawley系SPFラットの雄には交配前14日間及び交配期間を通して剖検前日(42日間投与)まで，雌には交配前14日間及び交配期間並びに妊娠期間を通して授乳4日まで(42〜48日間投与)投与し，反復投与毒性及び生殖発生毒性を検討した．更に，0及び1000 mg/kgについては42日間投与した後，14日間の回復期間を設け，毒性変化の可逆性を検討した．
一般状態，機能検査，握力測定，自発運動量の測定，体重，摂餌量，尿検査(摂水量を含む)，血液学検査，血液化学検査，剖検所見及び器官重量には被験物質投与による影響は認められなかった．
詳細な一般状態の観察では，オープンフィールド内観察において1000 mg/kg投与群の雄で投与3，4，5及び6週に立ち上がり回数の低値が認められたが，回復終了時検査には消失した．
病理組織学検査では，投与終了時検査において1000 mg/kg投与群の雄に前胃及び腺胃粘膜における細胞浸潤，腺胃の糜爛，腺胃におけるglobule leukocyte数の増加，腺胃粘膜の肥厚及び境界縁の肥厚が観察された．回復終了時検査にも腺胃におけるglobule leukocyte数の増加及び境界縁の肥厚は観察されたが，所見の程度は軽減し，可逆性の変化であった．
性周期，交尾までに要した日数，交尾率，授精率及び受胎率には被験物質投与の影響は認められなかった．また，母動物の妊娠期間，出産率，黄体数，着床痕数，着床率，分娩及び哺育行動，死産児数，死産児率，出産生児数，出生率，性比，出生児の出生時観察及び生後4日剖検所見，体重及び生存性には被験物質投与の影響は認められなかった．
これらの結果から，本試験条件下における2-アミノ-2-エチル-1,3-プロパンジオールの反復投与毒性に対する無影響量は雄で500 mg/kg/day，雌で1000 mg/kg/day，生殖発生毒性に対する無影響量は雌雄親動物及び児動物ともに1000 mg/kg/dayと判断した．
2-アミノ-2-エチル-1,3-プロパンジオール(東京化成工業，東京，ロット番号HDE01，純度99.4 %)は微黄色透明の粘性液体である．なお，投与終了後の残余被験物質を分析した結果，使用期間中は安定であったことが確認された．
被験物質は，投与容量が10 mL/kg体重となるように注射用水で希釈して25，50及び100 mg/mL溶液を調製した．調製は最大7日分を一括して行い，1日分ずつ褐色ガラス瓶(遮光瓶)に入れて冷蔵(実測値:3〜5℃)で保存した．なお，被験液は上記条件下で安定であることを確認した．また，投与1及び投与最終週の2回，投与に使用した被験液について濃度及び均一性を測定した結果，適正な濃度，均一性であった．
Sprague-Dawley系SPFラット・Crj:CD(SD)IGS，日本チャールス・リバー，厚木飼育センター・の雌雄各70匹を8週齢で入手し，14日間検疫・馴化飼育した．その間，一般状態の観察，体重測定及び性周期検査(検疫期間終了後の9日間)を基に，一般状態及び性周期に異常がなく，体重増加が良好な雌雄各58匹を選択し，10週齢で投与に使用した．投与開始日の体重範囲は，雄で345〜403 g，雌で206〜258 gであり，いずれの動物の体重も平均値±20 %以内であった．
動物は，群分け当日の体重に基づいて層別化し，各群平均体重がほぼ均等となるよう，コンピュータを用いて各群に割り付けた．
動物は，温度23±3℃，相対湿度50±20 %，換気回数1時間当たり10〜15回，照明1日12時間の飼育室で，金属製網ケージに1匹ずつ収容し，交配期間中は雌雄各1匹の計2匹を収容した．なお，妊娠17日から授乳4日までは，床敷(ホワイトフレーク:日本チャールス・リバー株式会社)を入れたプラスチック製エコンケージで個別に収容した．固形飼料(NMF，オリエンタル酵母工業)及び飲料水(水道水)を自由に摂取させ飼育した．
2週間投与による予備試験(投与量:125，250，500及び1000 mg/kg)の結果，OECD Test Guideline 422で投与限界量とされている1000 mg/kgにおいても被験物質投与の影響は認められなかった．これらの結果から，1000 mg/kgを高用量とし，以下公比2で除して500及び250 mg/kgの3用量を設定し，これに対照群を加えた計4群(1群の動物数は雌雄各12匹)を使用した．さらに，対照群及び1000 mg/kg群では回復群(1群の動物数は雌雄各5匹)を設けた．
被験液の投与容量は10 mL/kg体重とし，胃管を用いて1日1回強制経口投与した．対照群には溶媒(注射用水)を同様に投与した．投与液量は最新の体重を基準に算出した．回復期間は14日間とした．
投与期間中は毎日2回以上，回復期間中は毎日1回観察した．
(1) 詳細な一般状態の観察
投与開始前に1回，投与期間中及び回復期間中は毎週1回観察した．なお，観察及び検査は投与の情報を制限(ブラインド)し，動物をランダムに配置した状態で行った．
�．曄璽爛院璽呼盍兒�
姿勢，痙攣，異常行動
�⊆蠅忙�っての観察
ホームケージからの取り出し易さ，ハンドリングに対する反応(ハンドリング時の発声を含む)，被毛・皮膚の状態(被毛の汚れ，粗毛，外傷，皮膚の色など)，眼球(眼球突出，眼瞼の開き具合)，眼・鼻の分泌物，可 視粘膜，自律神経機能(流涙，流涎，立毛，瞳孔径，呼吸)
��オープンフィールド内観察
歩行，姿勢，覚醒状態，振戦，痙攣，立ち上がり回数，排泄物(排糞数，排尿)，常同行動(身繕い，旋回など)，異常行動(自咬，後方突進など)
(2) 機能検査
雄は投与終了週に，雌は授乳4日のF1児剖検後に，回復群の雌雄は回復終了週にそれぞれ1群当たり5匹について以下の検査をブラインドで行った．
[聴覚反応，接近反応，接触反応，痛覚反応，瞳孔反射，空中正向反射，着地開脚幅]
(3) 握力測定
上記機能検査に引き続き，前肢及び後肢の握力測定(CPUゲージMODEL-9502 A，アイコーエンジニアリング)の測定をブラインドで行った．
(4) 自発運動量の測定
上記握力測定に引き続き，自発運動量の測定(実験動物用自発運動センサーNS-AS01，ニューロサイエンス)をブラインドで行った．測定は1時間行い，10分間隔及び60分間の運動量を集計した．
投与期間及び回復期間を通じ，週2回(投与第1週と回復第1週は3回)の頻度で，交尾確認雌動物は妊娠0，4，7，11，14，17及び20日並びに授乳0及び4日に体重を測定した．
投与期間及び回復期間を通じ，週2回(投与第1週は3回)の頻度で，妊娠1，4，7，11，14，17及び20日並びに授乳2及び4日に摂餌量を測定した．
全個体について，群分け日までの性周期観察に引き続き，交尾確認日まで毎日腟スメアを採取し，鏡検した．交配前投与期間中は腟スメア像を発情前期，発情期，発情後期及び発情休止期に分類し，発情期像発現回数及び発情期から次の発情期までの日数(性周期)を調べた．交配期間中は腟スメア内の精子の有無を調べた．
交配前投与期間終了後，主群の同投与群の雌雄を1:1で終夜同居させ，翌朝，腟栓形成あるいは腟スメア中に精子を確認したものを交尾成立とみなした．交尾までに要した日数は交配開始日を0日と起算した．交配成績から交尾率(%)〔(交尾動物数/同居動物数)×100〕，受胎率(%)〔(妊娠した雌の数/交尾した雌の数)×100〕，授精率(%)〔(妊娠した雌の数/交尾した雄の数)×100〕を算出した．
(1) 母動物の観察
交尾確認雌動物は全例自然分娩させ，分娩状態の異常の有無を観察した．分娩終了の確認は妊娠21日から妊娠22日の午後まで1日2回(午前，午後)行い，妊娠期間を0.5日単位で算出した．分娩が午後5時に終了していた場合，その日を授乳0日とし，妊娠期間(日)(授乳0日−妊娠0日)及び出産率(%)〔(生存児出産雌数/妊娠雌数)×100〕を算出した．
分娩が終了した母動物は出生児の喰殺，胎盤及び羊膜の処理の有無を観察し，分娩終了日を授乳0日とし，授乳4日まで出生児を授乳させ，児集め，営巣及び授乳を指標として授乳状態を観察した．
母動物は授乳4日から一夜(約16〜20時間)絶食させた授乳5日に，各群5匹は血液学検査及び血液化学検査のための採血後に，その他の動物はエーテル麻酔下で腹大動脈切断により放血致死させ，黄体数及び着床痕数を数え，着床率(%)〔(着床痕数/黄体数)×100〕を算出した．
(2) 出生児の観察
出生日に生存児数，死産児数を数えた．出生児は外表異常の有無を観察し，性別を判定して体重を測定した後，母動物に授乳させた．また，死産児率(%)〔(死産児数/総出産児数)×100〕，出生率(%)〔(生存児数/総出産児数)×100〕，外表異常率(%)〔(外表異常児数/生存児数)×100〕及び性比〔雄数/(雄数+雌数)〕を算出した．死産児(死後変化の著しい場合は除く)はリン酸緩衝10 vol%ホルマリン液に固定し，保存した．出生児は生死の観察を授乳4日まで毎日1回行い，出生児生存率(%)〔(授乳4日生存児数/授乳0日生存児数)×100〕を算出した．授乳4日に体重を測定した後，全例をエーテル麻酔下で放血致死させて剖検を行い，頭部・胸部・腹部を含む器官･組織の異常の有無を調べた．なお，出生児の体重は個体別に体重を測定し，各腹単位で雌雄別に平均値を算出した．
投与最終週(投与38〜39日)及び回復終了週(回復9〜10日)に雄動物を代謝ケージに個別に収容し，絶食・自由摂水下で4時間尿を，次いで自由摂食・自由摂水下でその後の20時間尿を採取した．採取した最初の4時間尿を用いてpH，たん白質，ケトン体，グルコース，潜血，ビリルビン，ウロビリノーゲン(以上オーションスティックス-7EA試験紙，アークレイ)，色調(肉眼観察)及び沈渣(鏡検)を検査した．また，その後に得られた20時間尿を用いて浸透圧(氷点降下法，自動浸透圧測定装置 オートアンドスタットOM-6030，アークレイ)を測定し，4時間尿量及び20時間尿量から1日の尿量を算出した．更に，代謝ケージに収容した状態で，前日からの1日の摂水量を給水瓶を用いて測定した．
最終投与及び回復期間終了日の翌日の剖検時に検査を行った．前日から一夜(約16時間)絶食させた動物をエーテル麻酔下で開腹し，腹大動脈から抗凝固剤(EDTA-2 K)を加えた採血ビンに血液を採取し，赤血球数(電気抵抗変化検出法)，ヘモグロビン量(シアンメトヘモグロビン法)，ヘマトクリット値(平均赤血球容積及び赤血球数から算出)，平均赤血球容積(電気抵抗変化検出法)，平均赤血球血色素量(ヘモグロビン量及び赤血球数から算出)，平均赤血球血色素濃度(ヘモグロビン量及びヘマトクリット値から算出)，血小板数(電気抵抗変化検出法)，白血球数(電気抵抗変化検出法)(以上コールター全自動8項目血球アナライザーT890，ベックマン･コールター)，網赤血球率(Brecher法)及び白血球百分率(May-Giemsa鏡検法)を測定した．また，3.8 %クエン酸ナトリウムを加えた容器に採取した血液を遠心分離(3000回転/分，10分間)し，得られた血漿を用いてプロトロンビン時間(クロット法)，活性化部分トロンボプラスチン時間(クロット法)及びフィブリノーゲン量(トロンボプラスチン法)(以上，血液凝固自動測定装置ACL 100，Instrumentation Laboratory)を測定した．
血液学検査のための採血と同時に腹大動脈から採血し，遠心分離(3000回転/分，10分間)により得られた血清を用いてAlP(Bessey-Lowry法)，総コレステロール(CEH-COD-POD法)，トリグリセライド(LPL-GK- GPO-POD法)，リン脂質(PLD-ChOD-POD法)，総ビリルビン(ビリルビンオキシダーゼ法)，グルコース(グルコースデヒドロゲナーゼ法)，尿素窒素(Urease- LEDH法)，クレアチニン(Creatininase-creati-nase- sarcosine oxidase POD法)，ナトリウム，カリウム及び塩素(イオン選択電極法)，カルシウム(OCPC法)，無機リン(モリブデン酸法)，総たん白質(Biuret法)，アルブミン(BCG法)及びA/G比(総たん白質及びアルブミンから算出)を測定した．また，ヘパリンを加えた容器に採血し，遠心分離(3000回転/分，10分間)により得られた血漿を用いてAST，ALT，LDH(UV-rate法)及びg-GTP(L-g-グルタミル-3-カルボキシ-4-ニトロアニリド法)(以上，臨床化学自動分析装置TBA-120FR，東芝)を測定した．
全ての動物について，最終投与翌日及び回復期間終了日に，血液・血液化学検査のために採血した動物(各群雌雄各5匹)は採血後に，その他の動物は腹大動脈切断により放血致死させた後に，それぞれ体外表・頭部・胸部・腹部を含む全身の器官・組織の肉眼による詳細な病理解剖を行い，結果を記録した．なお，雌動物(母動物)は授乳5日に黄体数及び着床痕数を数えた．次いで，血液学検査及び血液化学検査の採血を行った各群雌雄各5匹について，以下に示す器官(精巣及び精巣上体は全例)の重量(絶対重量)を測定するとともに，絶対重量と剖検時の体重から体重100 g当たりの相対重量を算出した．なお，*印をつけた両側性の器官については左右別々に測定し，その合計値で評価した．
[脳，甲状腺*(上皮小体を含む)，胸腺，心臓，肝臓，脾臓，腎臓*，副腎*，精巣*及び精巣上体*]
全動物について，以下に示す全器官・組織を採取し，リン酸緩衝10vol%ホルマリン液で固定，保存した(但し，精巣及び精巣上体はブアン液で固定した後リン酸緩衝10vol%ホルマリン液で保存)．次いで，下線を施した器官・組織についてパラフィン包埋した後，切片としてヘマトキシリン・エオジン(H.E.)染色を行い，このうち対照群及び高用量群の血液･血液化学検査に供した雌雄各5匹について鏡検した(両側性の器官については両側を摘出し，片側を鏡検)．その結果，胃に被験物質投与の影響が認められたため，低及び中用量群並びに回復群についても雌雄各5匹を鏡検し，正常及び異常所見の代表例を撮影した．
[大脳，小脳，下垂体，脊髄(胸部)，坐骨神経，甲状腺，上皮小体，副腎，胸腺，脾臓，顎下リンパ節，腸間膜リンパ節，心臓，肺(気管支を含む)，胃，十二指腸，空腸，回腸，盲腸，結腸，直腸，肝臓，腎臓，膀胱，精巣，精巣上体，卵巣，子宮，精嚢，胸骨(骨髄を含む)，大腿骨(骨髄を含む)，個体識別部(耳介)]
交尾率，受胎率，授精率，出産率，出生児の性比，聴覚反応，接近反応，接触反応，痛覚反応，瞳孔反射，空中正向反射は，イェーツの連続修正によるx^2検定を行った(有意水準0.05及び0.01，両側)．ただし，期待度数が5以下のセルがみられる場合にはFisherの直接確率計算法により検定を行った(有意水準0.05及び0.01，両側)．着床率，死産児率，出生率，外表異常率，出生児生存率は動物ごとに率を求めた後，Bartlett検定により等分散性を検定し，等分散の場合はDunnett検定，非等分散の場合はDunnett型検定を行った(有意水準0.05及び0.01，両側)．その他の数値化した成績についてまずBartlett法により各群の分散の均一性の検定(有意水準:両側1 %)を行った．その結果，分散が均一の場合にはDunnett法を用いて対照群と各投与群との平均値の差の検定を，分散が均一でない場合には，Dunnett型の方法(mean rank test法)を用いて対照群と各投与群との平均順位の差の検定を行った(有意水準:いずれも両側5及び1 %)．また，尿の定性的項目及び病理組織学検査の成績についてはMann-WhitenyのU検定(有意水準:片側5及び1 %)を行った．
いずれの動物においても，投与期間及び回復期間を通じ異常はみられなかった．
詳細な一般状態の観察，機能検査，握力測定及び自発運動量の測定においては，1000 mg/kg投与群の雄で投与3，4，5及び6週にオープンフィールド内の立ち上がり回数に有意な低値が認められた．その他，500 mg/kg投与群の雌で授乳4日の握力測定に有意な高値，1000 mg/kg投与群の雌でオープンフィールド内の投与5週に立ち上がり回数の有意な高値，測定開始20〜30分の自発運動量に有意な高値が認められたが，用量との関連はない，または一時的であることから，変動範囲内の変化と考えられた．その他の検査項目では，いずれの動物にも異常はみられなかった．
各群の雌雄体重ともに対照群と各被験物質投与群との間に有意差は認められなかった．
各群の雌雄摂餌量ともに被験物質投与による影響は認められなかった．なお，主群においては250 mg/kg投与群の雄で投与42日に有意な低値，1000 mg/kg投与群の雌で妊娠4日に有意な高値，回復群においては1000 mg/kg投与群の雌で投与25及び29日に有意な高値，同群の雌では回復11日に有意な高値が認められたが，いずれも一時的であることから変動範囲内の変化と判断した．
1000 mg/kg投与群の雄では，好酸球の有意な低値が認められたが，高値でないことから毒性学的に意義はない．また，500 mg/kg投与群の雌では，リンパ球比率の有意な高値及び分葉好中球比率の有意な低値が認められたが，用量との関連がないことから，生理的変動範囲内の変化と考えられた.
1000 mg/kg投与群の雄では，赤血球数，ヘモグロビン量及びヘマトクリット値に有意な低値が認められたが，投与期間終了時にみられない変化であり，かつ投与期間終了時と同等値であることから，生理的変動範囲内の変化と判断した．同群の雌では，網状赤血球率に有意な低値が認められたが，軽微な変化であり，他の検査項目に有意差がみられないことから，生理的変動範囲内の変化と考えられた．
250 mg/kg以上の投与群の雄ではA/G比の有意な高値，1000 mg/kg投与群の雄でトリグリセライド及び尿素窒素に有意な高値，塩素の有意な低値，同群の雌ではg-GTPの有意な低値が認められた．
1000 mg/kg投与群の雌雄ともにいずれの検査項目にも有意差は認められなかった．
定量項目については，いずれの検査項目においても対照群と各被験物質投与群との間に有意差は認められなかった．定性項目については，主群及び回復群のいずれの動物にも異常はみられなかった．
絶対及び相対重量の双方に同一方向に有意差が認められた器官･組織はなかった．なお，以下の変化がみられた．500 mg/kg投与群の雌で脾臓の相対重量に有意な高値，500及び1000 mg/kg投与群の雌で腎臓の絶対重量に有意な高値が認められたが，用量との関連はなかった．
1000 mg/kg投与群の雌で甲状腺の絶対重量に有意な高値が認められた．
腺胃の暗赤色巣が500 mg/kg投与群の雌2例，精巣の小型化が250 mg/kg投与群の雄1例にみられたが，出現頻度及び病理学的性状から偶発的変化と判断した．
いずれの器官･組織においても，異常はみられなかった．
被験物質投与の影響が1000 mg/kg投与群の雄の胃にみられた．
軽微又は軽度な前胃及び腺胃粘膜における細胞浸潤が1000 mg/kg投与群の雄3例，軽微又は軽度な腺胃の糜爛が250 mg/kg投与群の雌2例，500 mg/kg投与群の雌2例及び1000 mg/kg投与群の雄3例と雌1例，腺胃における軽微又は軽度なglobule leukocyte1)数の増加が対照群の雄1例，500 mg/kg投与群の雄2例及び1000 mg/kg投与群の雄4例と雌1例，軽微又は軽度な腺胃粘膜の肥厚が1000 mg/kg投与群の雄3例，軽微又は軽度な境界縁の肥厚が対照群の雄1例，500 mg/kg投与群の雄2例及び1000 mg/kg投与群の雄5例にみられた．これら変化のうち，腺胃粘膜における細胞浸潤，腺胃の糜爛，腺胃におけるglobule leukocyte数の増加及び境界縁の肥厚の出現頻度が1000 mg/kg投与群の雄で増加し，所見の程度が増強した．
上記以外の所見は正常ラットでもしばしば認められる変化であること，あるいはその出現状況からいずれも偶発所見と判断した．
軽微な腺胃の糜爛が対照群の雌1例，腺胃における軽微なglobule leukocyte数の増加が1000 mg/kg投与群の雄3例と雌1例，軽微な境界縁の肥厚が1000 mg/kg投与群の雄5例にみられ，対照群と比べ腺胃におけるglobule leukocyte数の増加及び境界縁の肥厚の出現頻度が1000 mg/kg投与群の雄で増加した．
性周期異常の動物はみられず，平均性周期日数には対照群と各被験物質投与群との間に有意差は認められなかった．
対照群の1組が交配開始7日に，他の組み合わせは交配開始後4日までに交尾が成立し，雌全例が妊娠した．したがって，交尾までに要した日数，交尾率，授精率及び受胎率には対照群と各被験物質投与群との間に有意差は認められなかった．
分娩状態では，妊娠21.5〜22.5日に全例が正常に分娩し，出産率，妊娠期間，黄体数，着床痕数，着床率，死産児率，出産生児数及び出生率には対照群と各被験物質投与群との間に有意差は認められなかった．哺育状態では，いずれの母動物にも巣作り，児集め及び授乳行動に異常はみられなかった．
性比の有意な低値が500 mg/kg投与群に，出生時の雄体重の有意な高値が250 mg/kg投与群に認められたが，いずれも用量との関連はなかった．外表異常を有する出生児として，痕跡尾が1000 mg/kg投与群に1例みられたが，出現頻度及び外表異常の種類から自然発生によるものと考えられた．
哺育4日生存率には対照群と各被験物質投与群との間に有意差は認められなかった．
出生時の雄体重に有意な高値が250 mg/kg投与群に認められたが，用量との関連はなかった．哺育4日の体重には対照群と各被験物質投与群との間に有意差は認められなかった．
いずれの出生児にも異常はみられなかった．
一般状態，機能検査，握力測定，自発運動量の測定，体重，摂餌量，尿検査(摂水量を含む)，血液学検査，剖検所見及び器官重量の結果に被験物質投与による影響は認められなかった．
詳細な一般状態の観察では，オープンフィールド内観察において1000 mg/kg投与群の雄で投与3，4，5及び6週に立ち上がり回数の低値が認められた．しかし，他の検査項目，特に自発運動量に異常はなく，回復終了時検査にも認められないことから可逆性の変化であった．
血液化学検査では，投与期間終了時検査において250 mg/kg以上の投与群の雄でA/G比の高値，1000 mg/kg投与群の雄でトリグリセライドの高値，尿素窒素の高値，塩素の低値，同群の雌ではg-GTPの高値が認められたが，軽微な変化で関連検査項目に変動がなく，組織学的にも異常がないことから生理学的な変動範囲内の変化と判断した．
病理組織学検査では，投与終了時検査において1000 mg/kg投与群の雄に腺胃粘膜における細胞浸潤，腺胃の糜爛，腺胃におけるglobule leukocyte数の増加，腺胃粘膜の肥厚及び境界縁の肥厚が観察され，被験物質の胃への刺激性が示唆された．これら胃の変化のうち，腺胃におけるglobule leukocyte数の増加及び境界縁の肥厚が回復終了時検査においても観察されたが，所見の程度は軽減し，可逆性の変化であった．
性周期，交尾までに要した日数，交尾率，授精率及び受胎率には被験物質投与の影響は認められなかった．また，母動物の出産率，妊娠期間，黄体数，着床痕数，着床率，死産児数，死産児率，出産生児数，出生率及び性比に被験物質投与の影響は認められず，授乳期間中の授乳状態に異常は認められないことから，1000 mg/kg投与群においても雌雄動物の交尾能，授精能及び受胎能，母動物の妊娠維持，分娩及び哺育行動などの生殖機能への影響はないと考えられた．
出生児では，出生時の観察及び授乳4日剖検所見，体重及び生存率には被験物質投与群による変化は認められないことから，1000
mg/kg投与群においても胚･胎児の成長と形態学的変化，生後の成長･発達への影響はないと考えられた．
これらの結果から，本試験条件下における2-アミノ-2-エチル-1, 3-プロパンジオールの反復投与毒性に対する無影響量は雄で500
mg/kg/day，雌で1000 mg/kg/day，生殖発生毒性に対する無影響量は雌雄親動物及び児動物ともに1000
mg/kg/dayと判断した．
| 1) | Isao Narama, Kiyokazu Ozaki, Syuuichi Matsushima and Tetsuro Matsuura:Eosinophilic Gastroenterocolitis in Iron Lactate-Overloaded Rats, Toxicologic Pathology, 27(3):318-324(1999). |
| 連絡先 | |||
| 試験責任者: | 石田 茂 | ||
| 試験担当者: | 下山泰史，畠山和久，楠岡 修， 野田 毅，勝亦倶慶 | ||
| �螢椒哨螢機璽船札鵐拭叱翕他豸Φ羹� | |||
| 〒412-0039 静岡県御殿場市かまど1284 | |||
| Tel. 0550-82-2000 | Fax. 0550-82-2379 | ||
| Correspondence | |||
| Authors: | Shigeru Ishida(Study director) Yasushi Shimoyama, Kazuhisa Hatayama, Osamu Kusuoka, Tsuyoshi Noda, Toyohisa Katsumata | ||
| Gotemba Laboratory, Bozo Research Center Inc. | |||
| 1284, Kamado, Gotemba-shi, Shizuoka, 412-0039, Japan | |||
| Tel +81-550-82-2000 | Fax +81-550-82-2379 | ||
